Piuma Chiaro單細胞及組織力學性質測量儀
—將您的顯微鏡迅速升級為細胞力學測試系統
系統亮點概述
Piuma Chiaro是專門為單細胞、生物組織、人工組織的機械性能測試量身定做的儀器。可以安裝在實驗室現有的顯微鏡平臺上,快速提升顯微鏡的功能。其壓痕的探測范圍跨越幾個數量級別, 覆蓋單細胞、組織工程學和組織分類學中的所有測試尺度。
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功能強大,實用可靠,可以對細胞的楊氏模量、硬度、剛度和粘彈性進行測量
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可以進行非破壞性的機械測試
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界面友好,可以對組織外植體和體外培養的組織工程評估生物組織力學性質。
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測試楊氏模量范圍從100Pa到1GPa
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可換探頭壓痕深度從 100nm到300um
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可以在液體和凝膠中測試
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有一個較大的掃描行程
Piuma Chiaro 系統適應性強
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適用于任何型號的顯微鏡
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使用**設計的FIBER TOP技術進行測量
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安裝并使用一個非常敏感的測量探頭
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探頭可以進行X-Y軸移動,可以對一個樣品進行網格式多點測量
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手動操作可以粗調和細調定位
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Piuma Chiaro納米壓痕模塊可以安裝在任何顯微鏡上,對于細胞水平的樣品可以進行非常**的測量。
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Piuma Chiaro使得單細胞壓痕測量變得非常容易!系統還可在液體中測量,這對于一些模擬細胞所在的真實生理環境非常重要。
Piuma Chiaro 主要應用領域
細胞和生物軟組織的力學參數是一項至關重要的參數,如很多**都能引起細胞、軟組織硬度、楊氏模量的變化,如果能夠測得細胞和軟組織的力學參數,則可以預測病變的發生。
應用課題延伸領域分布
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高血壓心肌肥厚狀態下心肌細胞微尺度剛度變化
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測量大鼠心肌梗死心肌細胞的楊氏模量
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單細胞水平黃芪多糖對肝竇內皮細胞微區力學影響
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乳腺癌細胞的力學性質研究
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研究***對細胞形貌和力學性質的影響
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研究殼聚糖膜對細胞彈性的影響
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重離子束和X射線輻照對Tca-8113細胞遷移侵襲及生物力學的影響
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重離子和X射線輻照對皮質神經元細胞骨架及細胞力學性能的影響
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間充質干細胞對肝腫瘤細胞力生物學行為的影響
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牙周膜成纖維細胞彈性模量與內**作用關系
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急性分離平滑肌細胞進行高分辨成像及微觀力學研究
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姜黃素誘導人肝癌HepG2細胞凋亡的研究
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基底/細胞系統剛度對肝細胞和肝癌細胞遷移的調節作用
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前列腺癌生物力學性質的改變與其細胞惡性表型相關性的實驗研究
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**形態結構及其生物力學研究
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紅細胞及不同侵襲程度癌細胞的成像及機械特性測量
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缺氧大鼠心肌母細胞的楊氏模量
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心肌纖維與Ⅰ型膠原纖維的超微結構及生物力學特性研究
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宮頸癌細胞表面形貌與力學特性的研究
延伸應用課題
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組織工程中軟骨細胞力學性能及與材料作用單細胞研究
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植物的細胞力學行為研究及在***械損傷研究中的應用
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紅細胞及不同侵襲程度癌細胞的成像及機械特性測量
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單細胞水平黃芪多糖對肝竇內皮細胞微區力學影響的研究
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粘彈性細胞模型及其力學特性的有限元分析
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正常及神經管畸形小鼠神經上皮細胞力學特性的研究
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****LHRH-PE40對HeLa細胞表面硬度的影響
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豬卵母細胞透明帶彈性系數楊氏模量測定
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軟組織的楊氏模量測量
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熱刺激作用下血管內皮細胞形態及膜彈性變化
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人多形核白細胞彈性測試
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紅細胞變形性測試
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細胞流變學測量芯片系統的素研究
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水凝膠力學性質測試
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人工三維打印組織測試
Piuma 細胞、軟生物組織機械力特性測量測試納米壓痕系統
Piuma Nanoindenter
Nanoindentation for tissue engineering
Map the mechanical properties of tissues andcells in just one click!
能夠**測量*低硬度的生物組織組織(比如胚胎)的機械特性 , 可以液體中很好地測試軟組織的楊氏模量 .
原理:利用光和微觀納米技術進行納米壓痕和繪制*柔軟樣品,測量細胞組織的機械特性
生物軟組織(包括皮膚、血管、肌肉、肌腱韌帶及各種器官等)的楊氏模量是一項至關重要的參數,很**都能引起生物軟組織的楊氏模量
變化,如果能夠測得生物軟組織的楊氏模量,側可以預測病變發生。正常組織與病變組織的楊氏模量—形變曲線之間也存在差異。
楊氏模量是反應物質本身彈性性質的物理量,研究表明,生物組織的病理變化都往往導致組織的彈性性質的變化。癌癥通常變現為*硬的結塊;脂肪或膠原的沉積,增加或較少了組織彈性,導致**。
納米壓痕技術是細胞組織粘附特性、彈性特性、硬度和彈性模變量的有力工具 , 該系統是目前世界上***的細胞組織納米力學性能測試 儀器 ,可測定骨、牙齒或細胞等生物組織分層力學特性 .
對生理狀態下的活細胞進行壓痕實驗 , 得到了癌細胞表面彈性特性和粘附特性 , 并對癌細胞與正常細胞彈性特性和粘附特性進行了對比分析。根據細胞彈性模量和粘附力的大小可以進行癌癥診斷 , 為癌癥的診斷提供了新途徑
測試的組織和細胞的機械性質 , 只需輕點一下鼠標!
Piuma 生物納米壓痕 — 為生物組織工程設計的納米壓痕儀
· 我設計的樣品符合原生的組織樣品的機械性能測試嗎 ?
· 我的樣品在納觀 , 微觀和宏觀上的機械性能互相相關嗎 ?
· 為什么一定的外界條件(如脫水),能*大地改變某些組織的機械特性?
· 如何測試非均勻樣品上點對點的粘彈性性質的變化?
像你一樣的研究者可以研究著細胞和組織的力學機械性能在再生醫學和樣品分類中,因此Optics11公司設計了Piuma,一種**性的簡單易用的可以給納米和微觀的組織機械性能測試帶來光明的納米壓痕。
這個系統依靠一個**的微機械彈簧輕推小球壓入樣品。觀察樣品在溫和的壓力如何變形,該儀器在靜態載荷和動態操作能迅速提供的壓痕位置的所有的機械性能。
· 測試楊氏模量范圍從100Pa到1GPa
· 可換探頭從100nm到100um
· 可以在液體和凝膠中測試
· 有一個較大的掃描行程
· 可以在層流柜中使用
· 可以測試細胞外基質EMC的硬度
Piuma聯通了納米,微觀和宏觀的機械性能測試。壓頭尺寸可以變化放大幾個數量級別,可以覆蓋在組織工程學和組織分類學中所有的測試尺度.
只要插上探頭,使用內置的顯微鏡來選擇要對信息的區域,然后點擊開始按鈕。
在幾秒鐘內,你將對你的新樣品的機械性能有清醒的認識!
技術參數
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楊氏模式
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100 Pa–1 GPa
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準確度 / 精密
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<30%/<10%
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壓痕針尖尺寸
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100 nm–100 μm
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壓痕深度
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可達 17 μm( 連續行程 )
可達 12 mm(100nm 步進模式 )
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壓痕動態范圍
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~DC-1kHz( 連續行程 )
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樣品臺移動范圍
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12x12mm 2
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*小點至點間距
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<1μm
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柵格測繪速度
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樣品粘彈性限制
(高達 1 點 / 秒)
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樣品的溫度穩定性(可選)
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<0.5 °C
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內置顯微鏡的放大倍數
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20x
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外形尺寸
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測試設置 :100x100x200mm 3
電子設備 :215x200x170mm 3
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德國cellastix高通量單細胞 力學特性表征測量系統
產品詳細信息
單細胞高通量細胞激光牽張拉伸應力加載與力學屬性分析系統
Optical Stretcher是用于細胞生物力學高通量測量研究的激光光學牽張拉伸**平臺技術。
****臺用來高通量測量單個懸浮細胞(懸液細胞)的變形能力設備。
該激光光學牽張拉伸器是個可以安裝在任何相位差顯微鏡上的模塊。溫度穩定和激光**的顯微鏡系統。
Optical Stretcher 
**研究(Innovation in Research)
Optical Stretcher激光光學牽張拉伸器是一種新穎的用來測量和分析單個懸液細胞生物力學特性(比如:如彈性和松弛)的激光工具。
非接觸式細胞形變(Contact-free cell deformation)
無接觸式細胞形變“開放=”0“的風格=”2“]是激光力引起的懸浮細胞形變,這決定**的無接觸式測量。這可確保均勻的細胞處理,避免因接觸引起的細胞反應文物。
高通量單細胞流變
通過集成的微流體系統可以很可以容易地測定300個細胞/小時。這樣就可以在**時間收集細胞流變顯著的統計數據
省時,自動測量(Timesaving, automated measurements)
對應于用戶定義的拉伸模式,細胞被自動傳送到測量區域進行形變。在光學拉伸加載運行實驗中,你可以專注于闡述實驗結果。
產品規格
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包括有兩個壓力控制通道的微流體系統
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*大每個光纖2功率W摻鐿光纖激光器
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安裝倒置相差顯微鏡
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激光**和溫度控制
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可選用組合熒光顯微鏡
軟件規格
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使用CellStretcher模塊控制所有組件和自動測量細胞
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由CellEvaluator提取記錄顯微圖像形變數據
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由CellReporter統計分析和可視化特性參數
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為自己的統計分析訪問原始數據
產品特點:
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非接觸式和無標記的細胞測量
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高通量-250細胞/小時
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省時的自動測量
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模塊可以在任何倒置相差顯微鏡進行安裝
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外殼激光**和穩定的溫度
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數據評估軟件
產品規格:
Fibolux laser system 2 W
reliable microfluidic system for easy probe handling
尺寸 cm (w x h x d): 70 x 80 x 100
Options
combination with fluorescence microscopy

技術
optical stretcher 是一種新穎的微操縱單個生物細胞激光工具,探討在懸浮液的粘彈性性質[1]。



通過兩個對立的激光束鉗持一個細胞,進行牽張拉伸細胞兩邊。更高的激光功率使細胞發生形變。
細胞的形變是由CCD相機記錄,并由一專門設計的軟件進行評估。
Optical Stretcher 測量室集成有微流系統,使得細胞容易地一個接一個地輸送
可以達到每小時約250個細胞的高吞吐率,允許相對于其它工具,例如原子力顯微鏡(AFM)更好的統計信息。
Momentum transfer at the cell surface
Cell mechanics as a disease marker
The physical mechanics of cells are important for their regular, biological functioning and are regulated by a structure called the cytoskeleton. It is involved in many vital processes of the cell. If these are changes this naturally results also in changes of the biomechanical properties, which can be measured with the Optical Stretcher. There is already published data for cancer [2, 3] and for the effect of cell aging [4].
Several ongoing studies examine the ability of the Optical Stretcher to differentiate between the stages of a cancer tumor, making it a valuable tool for both scientific research and clinical diagnosis [5].
Cell types can be differentiated by their deformation in the optical stretcher
細胞形變力源自激光。當光被折射在細胞表面存在的光子的動量的變化。因為整體動量必須始終保守有一個在垂直于作用于它的力形式的動量轉移到細胞表面。
Research
Our device allows various applications in basic research of biophysics, biology & medicine.
Industry
Due to the high-throughput the Optical Stretcher is suitable for industrial drug-screening.
Clinical Diagnostic
First clinical trials with breast cancer tumors show a different deformation of cancerous cells.
應用:
生物物理研究(Biophysical Research)
Characterization of fundamental cytoskeletal functions and processes in eukaryotic cells
**篩選(Drug Screening)
Testing new substances and their efficiency on a cellular basis
Aging proscesses
Identification of markers for cell aging and testing of anti-aging substances
干細胞分化(Differentiation)
Utilization of cell stiffness as a marker for differentiation processes in stem cells
Immune response
Investigation of cytoskeletal changes of immune-activated cells
Mechanisms of diseases
New insight in cellular changes caused by diseases such as cancer, malaria or sepsis
Publications
Optical Stretcher Technology
Lincoln, B., Schinkinger, S., Travis, K., Wottawah, F., Ebert, S., Sauer, F., Guck, J., 2007. Reconfigurable microfluidic integration of a dual-beam laser trap with biomedical applications. Biomed. Microdevices 9, 703–710. doi:10.1007/s10544-007-9079-x
Ebert, S., Travis, K., Lincoln, B., Guck, J., 2007. Fluorescence ratio thermometry in a microfluidic dual-beam laser trap.Opt. Express 15, 15493–15499. doi:10.1364/OE.15.015493
Jensen-McMullin, C., Lee, H.P., Lyons, E.R.L., 2005. Demonstration of trapping, motion control, sensing and fluorescence detection of polystyrene beads in a multi-fiber optical trap. Opt. Express 13, 2634–2642. doi:10.1364/OPEX.13.002634
Wottawah, F., Schinkinger, S., Lincoln, B., Ananthakrishnan, R., Romeyke, M., Guck, J., K?s, J., 2005.Optical Rheology of Biological Cells. Phys. Rev. Lett. 94, 098103. doi:10.1103/PhysRevLett.94.098103
Lincoln, B., Erickson, H.M., Schinkinger, S., Wottawah, F., Mitchell, D., Ulvick, S., Bilby, C., Guck, J., 2004. Deformability-based flow cytometry.Cytometry A 59A, 203–209. doi:10.1002/cyto.a.20050
Theoretical Models
Ananthakrishnan, R., Guck, J., Wottawah, F., Schinkinger, S., Lincoln, B., Romeyke, M., Kas, J., 2005. Modelling the structural response of an eukaryotic cell in the optical stretcher. Curr. Sci. 88.
B. Bareil, P., Sheng, Y., Chiou, A., 2006. Local scattering stress distribution on surface of a spherical cell in optical stretcher. Opt. Express 14, 12503–12509. doi:10.1364/OE.14.012503
Bareil, P.B., Sheng, Y., Chen, Y.-Q., Chiou, A., 2007. Calculation of spherical red blood cell deformation in a dual-beam optical stretcher. Opt. Express 15, 16029–16034. doi:10.1364/OE.15.016029
Boyde, L., Ekpenyong, A., Whyte, G., Guck, J., 2012. Comparison of stresses on homogeneous spheroids in the optical stretcher computed with geometrical optics and generalized Lorenz–Mie theory. Appl. Opt. 51, 7934–7944. doi:10.1364/AO.51.007934
Ekpenyong, A.E., Posey, C.L., Chaput, J.L., Burkart, A.K., Marquardt, M.M., Smith, T.J., Nichols, M.G., 2009. Determination of cell elasticity through hybrid ray optics and continuum mechanics modeling of cell deformation in the optical stretcher.Appl. Opt. 48, 6344–6354. doi:10.1364/AO.48.006344
Teo, S.-K., Goryachev, A.B., Parker, K.H., Chiam, K.-H., 2010. Cellular deformation and intracellular stress propagation during optical stretching. Phys. Rev. E 81, 051924. doi:10.1103/PhysRevE.81.051924
Cancer research and diagnostics
Martin, M., Müller, K., Cadenas, C., Hermes, M., Zink, M., Hengstler, J.G., K?s, J.A., 2012. ERBB2 overexpression triggers transient high mechanoactivity of breast tumor cells. Cytoskeleton 69, 267–277. doi:10.1002/cm.21023
Fritsch, A., H?ckel, M., Kiessling, T., Nnetu, K.D., Wetzel, F., Zink, M., K?s, J.A., 2010. Are biomechanical changes necessary for tumour progression?Nat. Phys. 6, 730–732. doi:10.1038/nphys1800
Brunner, C., Niendorf, A., K?s, J.A., 2009. Passive and active single-cell biomechanics: a new perspective in cancer diagnosis. Soft Matter 5, 2171–2178. doi:10.1039/B807545J
Remmerbach, T.W., Wottawah, F., Dietrich, J., Lincoln, B., Wittekind, C., Guck, J., 2009. Oral Cancer Diagnosis by Mechanical Phenotyping. Cancer Res. 69, 1728–1732. doi:10.1158/0008-5472.CAN-08-4073
Martin, M., Mueller, K., Wottawah, F., Schinkinger, S., Lincoln, B., Romeyke, M., K?s, J.A., 2006. Feeling with light for cancer. p. 60800P–60800P–10. doi:10.1117/12.637899
Guck, J., Schinkinger, S., Lincoln, B., Wottawah, F., Ebert, S., Romeyke, M., Lenz, D., Erickson, H.M., Ananthakrishnan, R., Mitchell, D., K?s, J., Ulvick, S., Bilby, C., 2005. Optical Deformability as an Inherent Cell Marker for Testing Malignant Transformation and Metastatic Competence. Biophys. J. 88, 3689–3698. doi:10.1529/biophysj.104.045476
Stem cell research
Ekpenyong, A.E., Whyte, G., Chalut, K., Pagliara, S., Lautenschlaeger, F., Fiddler, C., Paschke, S., Keyser, U.F., Chilvers, E.R., Guck, J., 2012.Viscoelastic Properties of Differentiating Blood Cells Are Fate- and Function-Dependent. Plos One 7, e45237. doi:10.1371/journal.pone.0045237
Galle, J., Bader, A., Hepp, P., Grill, W., Fuchs, B., Kas, J.A., Krinner, A., MarquaB, B., Muller, K., Schiller, J., Schulz, R.M., von Buttlar, M., von der Burg, E., Zscharnack, M., Loffler, M., 2010. Mesenchymal Stem Cells in Cartilage Repair: State of the Art and Methods to monitor Cell Growth, Differentiation and Cartilage Regeneration. Curr. Med. Chem. 17, 2274–2291. doi:10.2174/092986710791331095
Maloney, J.M., Nikova, D., Lautenschlager, F., Clarke, E., Langer, R., Guck, J., Van Vliet, K.J., 2010. Mesenchymal Stem Cell Mechanics from the Attached to the Suspended State. Biophys. J. 99, 2479–2487. doi:10.1016/j.bpj.2010.08.052
Lautenschl?ger, F., Paschke, S., Schinkinger, S., Bruel, A., Beil, M., Guck, J., 2009. The regulatory role of cell mechanics for migration of differentiating myeloid cells. Proc. Natl. Acad. Sci. 106, 15696–15701. doi:10.1073/pnas.0811261106
Basic research
Gyger, M., Stange, R., Kiessling, T.R., Fritsch, A., Kostelnik, K.B., Beck-Sickinger, A.G., Zink, M., Kaes, J.A., 2014. Active contractions in single suspended epithelial cells. Eur. Biophys. J. Biophys. Lett. 43, 11–23. doi:10.1007/s00249-013-0935-8
Seltmann, K., Fritsch, A.W., K?s, J.A., Magin, T.M., 2013. Keratins significantly contribute to cell stiffness and impact invasive behavior. Proc. Natl. Acad. Sci. 201310493. doi:10.1073/pnas.1310493110
Kie?ling, T.R., Stange, R., K?s, J.A., Fritsch, A.W., 2013. Thermorheology of living cells—impact of temperature variations on cell mechanics. New J. Phys. 15, 045026. doi:10.1088/1367-2630/15/4/045026
Kie?ling, T.R., Herrera, M., Nnetu, K.D., Balzer, E.M., Girvan, M., Fritsch, A.W., Martin, S.S., K?s, J.A., Losert, W., 2013. Analysis of multiple physical parameters for mechanical phenotyping of living cells. Eur. Biophys. J. 42, 383–394. doi:10.1007/s00249-013-0888-y
Paschke, S., Weidner, A.F., Paust, T., Marti, O., Beil, M., Ben-Chetrit, E., 2013. Technical advance: Inhibition of neutrophil chemotaxis by colchicine is modulated through viscoelastic properties of subcellular compartments. J. Leukoc. Biol. 94, 1091–1096. doi:10.1189/jlb.1012510
Chalut, K.J., H?pfler, M., Lautenschl?ger, F., Boyde, L., Chan, C.J., Ekpenyong, A., Martinez-Arias, A., Guck, J., 2012. Chromatin decondensation and nuclear softening accompany Nanog downregulation in embryonic stem cells. Biophys. J. 103, 2060–2070. doi:10.1016/j.bpj.2012.10.015
Matthews, H.K., Delabre, U., Rohn, J.L., Guck, J., Kunda, P., Baum, B., 2012. Changes in Ect2 localization couple actomyosin-dependent cell shape changes to mitotic progression. Dev. Cell 23, 371–383. doi:10.1016/j.devcel.2012.06.003
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Rusciano, G., 2010. Experimental analysis of Hb oxy–deoxy transition in single optically stretched red blood cells. Phys. Med. 26, 233–239. doi:10.1016/j.ejmp.2010.02.001
Aging processes
Schulze, C., Wetzel, F., Kueper, T., Malsen, A., Muhr, G., Jaspers, S., Blatt, T., Wittern, K.-P., Wenck, H., K?s, J.A., 2010.Stiffening of Human Skin Fibroblasts with Age. Biophys. J. 99, 2434–2442. doi:10.1016/j.bpj.2010.08.026
Vesicles
Solmaz, M.E., Sankhagowit, S., Biswas, R., Mejia, C.A., Povinelli, M.L., Malmstadt, N., 2013. Optical stretching as a tool to investigate the mechanical properties of lipid bilayers. Rsc Adv. 3, 16632–16638. doi:10.1039/c3ra42510j
Solmaz, M.E., Biswas, R., Sankhagowit, S., Thompson, J.R., Mejia, C.A., Malmstadt, N., Povinelli, M.L., 2012. Optical stretching of giant unilamellar vesicles with an integrated dual-beam optical trap. Biomed. Opt. Express 3, 2419–2427. doi:10.1364/BOE.3.002419
Technical advances
Bellini, N., Bragheri, F., Cristiani, I., Guck, J., Osellame, R., Whyte, G., 2012. Validation and perspectives of a femtosecond laser fabricated monolithic optical stretcher. Biomed. Opt. Express 3, 2658–2668. doi:10.1364/BOE.3.002658
Bellini, N., Vishnubhatla, K.C., Bragheri, F., Ferrara, L., Minzioni, P., Ramponi, R., Cristiani, I., Osellame, R., 2010.Femtosecond laser fabricated monolithic chip for optical trapping and stretching of single cells. Opt. Express 18, 4679–4688. doi:10.1364/OE.18.004679
美國Flexcellint國際公司,成立于1987年,該公司專注于細胞力學培養產品的設計和制造。以提供獨特的體外細胞拉應力、壓應力和流體剪切應力加載刺激系統以及配套的培養板、硅膠膜載片等耗材聞名于世。
Flexcell細胞組織力學培養系統不僅能對各種2D、3D細胞組織提供拉應力、壓應力、切應力刺激加載,而且還可以提供拉應力和切應力混合力同時加載;不僅能對細胞組織進行機械力加載刺激,而且還能進行三維培養、人工生物組織構建、動力模擬;不僅能單軸向牽張拉伸,而且還可以雙軸向牽張拉伸。
Flexcell獨具的StageFlexer拉應力顯微設備、StagePresser壓應力顯微設備、Flex Flow切應力顯微設備,可在加力培養的同時實時觀察研究細胞組織在力作用下的反應變化;獨具的flexstop隔離閥能使同一塊培養板里的細胞組織一部分受力,一部分不受力,方便進行對比實驗
這些系統智能、精準誘導來自各種細胞、組織在拉應力、壓應力和流體切應力作用下發生的生化生理變化,專業、細膩的闡釋了體外細胞、組織機械力刺激加載、力學信號感受和響應機制。對研究細胞的形態結構及功能,細胞的生長、發育、成熟、增殖、衰老、凋亡、死亡及癌變以及通路表達,細胞信號傳導及基因表達的調控,細胞的分化及其調控機理具有重要意義。
細胞組織應力背景與作用
生命活動中無論是心臟的博動、動脈的收縮和舒張、腸道的蠕動,骨生長正畸,肌肉生長正畸,血管蠕動,肢體運動,器官活動,還是胸肺的呼吸都不斷地對參與其中的細胞施加動態的應力(拉應力、壓應力、切應力)作用。因此正確理解細胞對外應力刺激行為對骨肉正畸、肌肉收縮、創傷修復、腫瘤轉移、器官組織康復等許多重要生物醫學領域都有十分重要的意義
應力信號協同生物化學信號是生物自適應結構自我設計和調控長成的設計和調控者,細胞核是細胞代謝活動的控制中心,指揮它的活動除了遺傳密碼外主要是外部刺激傳來的信號。細胞處于組織的應力環境中,應力刺激細胞膜并通過微絲和微管傳遞到細胞核,應力信號在傳遞過程中引起一系列生化反應。*新研究成果已證明應力信號與化學信號在決定細胞活動中具有同等重要性,應力信號在調控細胞的分化、生長和凋亡中起著主導作用。應力刺激按作用方向分為張應力、壓應力和切應力(血流對管壁)等,按時間分為定常和脈動應力。
研究確認應力是調控功能細胞的決定性因素
應力仿真加載模擬膜型是細胞力學研究面臨的首要問題
由于生物體內器官和組織結構*其復雜,生物個體也存在較大差異,致使在體細胞的力學環境復雜多樣,從而增加在體細胞力學行為研究的難度。由于生物體內的細胞、細胞膜*小,宏觀力學加載方法和實驗技術無法直接使用,因此,尋找合適細胞力學加載方法和能膜擬生命體內細胞組織生長生物力環境的細胞組織體外機械力加載裝置,實現體外分離和建立合適的加載膜型是細胞力學研究面臨的首要問題。美國Fexcell®研制的體外細胞組織拉應力、壓應力、和流體剪切力加載仿真模擬模型系統智能、精準誘導來自各種細胞、組織在拉力、壓力和流體切應力等體外機械力刺激作用下發生的生化生理變化,專業、細膩的闡釋了體外細胞、組織機械力刺激加載、力學信號感受和響應機制。國內外有近3000篇成功應用文獻案例,詳見應用案例文獻庫,是細胞組織力學研究者的優選。
Flexcell總授權代理
世聯博研北京科技有限公司是Flexcell細胞力學設備與耗材在中國大陸、香港、澳門、馬來西亞、新加波區域總授權代理商, 為廣大科研用戶提供flexcell全系列產品,詳情致電國內免費客服電話:400-650-8506咨詢索取資料
1、FX-5000T細胞牽張拉伸應力加載系統(Flexcell FX5000 Tension system)
系統基本原理(負氣壓交換模式):
橡膠密封墊在細胞培養板基底膜與基板之間形成封閉腔,把此密封腔的進、出氣管插入二氧化碳培養箱里,把此密封腔放入二氧化碳培養箱, 利用封閉腔抽真空產生的負壓使彈性基底膜(拉動三維支架)發生形變,通過計算機控制系統調節氣體的壓力來改變基底膜的形變量,進而使貼壁生長的細胞受到牽拉加載刺激。
亮點:
1)該系統對二維、三維細胞和組織各種培養物提供軸向和圓周應力加載;不但具有雙軸向拉伸力加載,還具備單軸向加力功能
2)計算機控制的應力加載系統,為體外培育的細胞提供**的、可控制的、可重復的、靜態的或者周期性的應力變化。
3)使用真空泵,抻拉培養板底部的彈性硅膠模,細胞培養板底部*高伸展度可達到33%,通過氣體裝置可以自動調節和控制應力。
4)基于柔性膜基底變形、受力均勻;
5)可實時觀察細胞、組織在應力作用下的反應;
6)獨具的flexstop隔離閥可使同一塊培養板力的一部分培養孔的細胞受力,一部分培養孔的細胞不受力,方便對比實驗;
7)與壓力傳導儀整合,同時兼備多通道細胞壓力加載功能;
8)與Flex Flow平行板流室配套,可在牽拉細胞的同時施加流體切應力;
9)多達4通道,可4個不同程序同時運行,進行多個不同拉伸形變率對比實驗;
10)同一程序中可以運行多種頻率,多種振幅和多種波形;
11)加載模擬波形種類豐富:靜態波形、正旋波形、心動波形、三角波形、矩形以及各種特制波形;
12)更好地控制在超低或超高應力下的波形;
13)電腦系統對牽張拉伸力加載周期、大小、頻率、持續時間**智能調控
14)加載分析各種細胞在牽張拉應力刺激下的生物化學反應
15)伸展度范圍廣:0-33%
16)牽拉頻率范圍廣:0.01-5Hz
17)典型應用:
該系統感應各種細胞在應力刺激下的生物化學反應,例如:骨骼細胞,肺細胞,心肌細胞,血細胞,皮膚細胞,
肌腱細胞,韌帶細胞,軟骨細胞和骨細胞等各種2D或3D細胞組織。
典型應用科室:
口腔
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顳下頜關節滑膜細胞、人牙周膜細胞、口腔上皮細胞、口腔鱗癌KB細胞等
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骨:
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骨骼細胞、肌腱細胞、韌帶細胞、軟骨細胞和骨細胞、骨髓間充質干細胞,
軟骨組織、椎間盤骨組織、肌腱組織、韌帶組織等
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肺呼吸
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肺細胞、肺上皮細胞、肺動脈內皮細胞、人肺微血管內皮細胞
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眼科視覺神經
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眼上皮細胞、眼小梁組織細胞、視網膜神經細胞
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心血管/高血壓:
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心肌細胞、血細胞、心血管平滑肌細胞、血管內皮細胞
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生殖
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腎膀胱細胞、平滑肌細胞/尿路上皮及尿路上皮細胞、腎小管上皮細胞
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消化
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腸上皮細胞、 胃上皮細胞、胃血管內皮細胞
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皮膚
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皮膚細胞、皮膚成纖維細胞
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18)系統具有模塊化易升級,可擴展兼備壓力加載、流體切應力加載、三維細胞組織培養功能。
19)系統可以和BioFlex雙向拉應力培養板, Uniflex單向拉應力培養板 、TissueTrain三維細胞組織培養板等系列細胞培養一起使用,
培養板類型、包被表面材料豐富:Amino, Collagen (Type I or IV), Elastin, ProNectin (R GD), Laminin (YIGSR).表面涂層豐富的
包被材料, 您可以跟根據不同細胞組織可以靈活選擇不同包被材料表面 (包被材料選擇參考)。
該應力加載系統配套培養板
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*大伸展率
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Culture Plate for tension system
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Max Achievable Strain
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BioFLEX®雙向應力細胞培養板(BioFLEX®CULTURE PLATES)
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21.80%
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Tissue Train三維細胞組織培養板(Tissue Train culture plates)
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20.80%
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UniFlex?單向應力細胞培養板(UniFlex?Culture Plates)
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12.20%
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24孔高通量BIOFLEX®培養板培養板(HT BIOFLEX®CULTURE PLATES)
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15.00%
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No Loading Stations
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33%
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1、BioFLEX®雙向應力細胞培養板(BioFLEX®CULTURE PLATES)
21)觀察方便:使用正直顯微鏡或倒置顯微鏡都可以,而且通過StageFlexer顯微應力加載設備,實時觀察細胞、組織在應力作用下的反應
22) FX-5000T細胞牽張拉伸應力加載系統組成:
預裝FlexSoft®FX-5000控制軟件的計算機
FX5K? Tension FlexLink應力加載控制傳導儀
BioFlex一個真空腔應力加載基板,四個密封墊片
BioFlex一套直徑為25mm的BioFlex應力加載平臺
4塊BioFlex 膠原蛋白1型包被細胞培養板
一個干燥過濾器
一對濾水器,
一根25英尺藍色Flex In鏈接管(6.4毫米外徑)
一根25英尺無色Flex Out鏈接管(9.5毫米外徑)
一根25英尺牽張拉伸泵鏈接藍管(9.5毫米外徑)
硅膠潤滑油
*大真空度-100Kpa,161升/分的真空負壓泵
2、FX-5000C細胞壓力加載系統(flexcell FX5000 Compression system)——提供樣機體驗
系統基本原理(正氣壓交換模式):
利用橡膠密封墊在細胞培養板基底膜與基座之間形成封閉腔,把此密封腔的進、出氣管插入二氧化碳培養箱里,把此密封腔放入二氧化碳培養箱,利用封閉腔正氣壓擠壓培養孔里的活塞,進而使活塞和固定臺之間的凝膠三維培養物間接受到壓力發生形變,通過計算機控制系統調節氣體的壓力來改變基底膜的形變量。
(注釋:壓力加載培養板每個培養孔里都有一對活塞或固定臺)
亮點
1)該系統對各種組織、三維細胞培養物提供周期性或靜態的壓力加載;
2)基于柔性膜基底變形、受力均勻;
3)可實時觀察細胞、組織在壓力作用下的反應;
4)可有選擇性地封阻對細胞的應力加載;
5)同時兼備多通道細胞牽拉力加載功能;
6)多達4通道,可4個不同程序同時運行,進行多個不同壓力形變率對比實驗;
7)同一程序中可以運行多種頻率(0.01- 5 Hz),多種振幅和多種波形;
8)更好地控制在超低或超高應力下的波形;
9)多種波形種類:靜態波形、正旋波形、心動波形、三角波形、矩形以及各種特制波形;
10)電腦系統對壓力加載周期、大小、頻率、持續時間**智能調控
11)壓力范圍:0.1 - 14磅,夾在活塞和固定臺之間的BioPress細胞培養板可承受正壓力的*大值為14磅,*小值為0.1磅。
12) 典型應用科室:
檢測各種三維細胞組織在壓力作用下的生物變化、反應,
例如:軟骨組織,椎間盤骨組織,肌腱組織,韌帶組織,以及從肌肉,肺,心臟,血管,皮膚,肌腱,韌帶,軟骨和骨中分離出來的細胞。
13)在智能電腦主機的控制下,壓力傳導儀內的密封閥門裝置自動調節和控制壓力。
14)系統具有模塊化易升級,可擴展拉應力加載、流利切應力加載、三維細胞組織培養功能。具有細胞組織力學所要求的所有類型:牽張拉伸力、壓力、流體切應力加載刺激功能。
15)通過StagePress顯微壓應力加載設備,實時觀察細胞、組織在拉/壓應力作用下的反應
16) FX-5000C細胞組織壓應力加載系統組成:
預裝FlexSoft®FX-5000軟件的的計算機;
FX5K? Compression FlexLink壓力加載控制傳導儀
一個正壓力加載培養腔室基板
一套密封墊片和壓力夾固系統
四塊六孔細胞壓力加載培養板
一根25英尺藍色Flex In鏈接管(6.4毫米外徑)
一根25英尺無色Flex Out鏈接管(9.5毫米外徑)
一根25英尺牽張拉伸泵鏈接藍管(9.5毫米外徑)
一臺正壓泵
細胞組織壓應力加載刺激系統總結
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培養物級別
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既能對各種組織培養物提供周期性的或靜態的壓力加載,又能對各種三維細胞培養物提供周期性的或靜態的壓力加載
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壓應力波形
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系統既能提供壓應力加載的靜態波形、正旋波形、心動波形、三角波形、矩形波形,又能模擬各種自定義波形, 很好地控制在超低或超高壓應力下的波形.
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多通道加載
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同一程序中可以運行多種頻率,多種振幅和多種波形,4個不同程序可以同時運行,方便進行不同壓力比對比實驗;
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壓力范圍
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0.1 - 14磅
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加載頻率
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0.01- 5 Hz
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壓應力刺激細胞組織類型
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能對軟骨組織、椎間盤骨組織、肌腱組織、韌帶組織,以及從肌肉、肺、心臟、血管、皮膚、肌腱、韌帶、軟骨和骨中分離出來的細胞加壓應力刺激;
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觀察
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在壓應力作用的同時,可以實時觀察細胞組織在壓應力作用下的反應
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易用性
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使用常規的細胞組織壓力加載刺激培養板或培養皿模式進行加載培養,符合常規操作,避免學習難度
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3、全自動可牽張拉伸刺激立體水凝膠支架三維細胞培養系統(Flexcell TissueTrain System)——提供樣機體驗
FLEXCELL Tissue Train®是個獨立的全自動細胞組織三維培養、組織構建計算機智能控制的生物反應器系統,它允許研究者創建三維基質凝膠支架,
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真正意義上的三維培養——該系統以多種包被表面(Amino、Collagen (Type I or IV)、Elastin、 ProNectin (RGD)、Laminin (YIGSR))的水凝膠為細胞外基質支架——水凝膠支架因在液態時包裹細胞,固態時形成交聯網絡,細胞粘附力強,良好水分、養分交換。
水凝膠是一種狀似果凍的物質,具有高彈性、吸水性的聚合物組成的網狀物,用于組織工程中,作為幫助細胞生長和發展的支架.
利用立體水凝膠支架作為平臺,觀察不同細胞的交互作用,建立組織和器官。同時通過在立體環境中培育細胞,有助于更深入地了解細胞過程和交互作用.
在基質里細胞培養、構建生物組織,可為三維細胞、組織提供雙軸向應力和單軸向應力,FLEXCELL Tissue Train®
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是當今科研界***的可拉伸刺激三維細胞培養、生物組織構建系統。
系統基本原理:(負氣壓交換模式+各種三維培養磨具+三維培養板模式)
細胞組織加力模塊加上圓形、梯形、矩形三維培養模具以及各種三維培養板構成。
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系統功能亮點:
三維細胞牽張應力加載刺激:對生長在三維狀態下的細胞進行靜態的或者周期性的拉應力刺激
通過Flexcell應力加載系統和弧矩形加載平臺對生長在三維環境下的細胞進行單軸向
或者雙軸向的靜態或者周期性的應力加載刺激培養
三維細胞培養:使用三維組織培養模具和三維細胞培養板可以進行三維細胞培養在凝膠支架里全自動三維培養
三維組織培養模具和三維細胞培養板類型豐富:
1)三維組織培養模具有三維線形培養加載基站模具和三維梯形培養加載基站模具
2)具有氨基酸包被表面、膠原(I型或IV)包被表面、彈性蛋白包被表面、ProNectin(RGD)包被表面、層粘連蛋白(YIGSR)包被表面的三維培養板。
科研者根據自己的細胞,有針對性的選擇適合包被表面三維培養板
3)具有可牽拉雙軸向和單軸向拉力刺激加載三維組織培養板。
大體積三維生物人工組織培養構建:可構建長度達35mm的生物人工組織
動力模擬實驗:可建立特制的各種模擬實驗:心率模擬實驗、步行模擬實驗、跑動模擬實驗和其他動力模擬實驗
本系統技術**性:
1)**快速的擴增細胞
2)在細胞特異性基質(圓盤形陶瓷載體培養片) 中進行三維的細胞高密度培養
3)擴增并獲得可用于**的有活性的原代細胞
4)在控制分化狀態的條件下擴增干細胞
5)向植入的一代細胞提供植入支架
6)長期培養分泌細胞
7)高效生產重組蛋白和疫苗
8)生產上等的糖蛋白
9)三維培養與機械力刺激有機結合
10)三維凝膠壓實自動測量與面積自動計算
可用于多個領域,如研究、生物制藥加工;也可為細胞和組織培養工作提供解決方案:
1)可用于干細胞和胚體擴增及定向分化
2)可用于細胞和組織**的細胞制備
3)可用于克隆細胞,為器官移植做準備(例如hip stem, heart valve, graft)
4)可用于制備天然的生物制品(例如糖蛋白、病毒、病毒樣顆粒)
觀察細胞應力下實時反映:使用Flexcell獨有的Flexcell StageFlexer Jr.顯微附屬設備,可在加力刺激的同時實時觀察細胞在三維狀態下牽拉刺激的反應
多種基質蛋白包被的尼龍網錨可以加強細胞與網錨的結合
系統可以和Tissue Train?三維細胞組織培養板等系列細胞培養一起使用,
培養板類型、包被表面材料豐富:Amino, Collagen (Type I or IV), Elastin, ProNectin (R GD), Laminin (YIGSR).表面涂層豐富的
包被材料, 您可以跟根據不同細胞組織可以靈活選擇不同包被材料表面 (包被材料選擇參考)。
該系統培養套耗材
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CIRCULAR FOAM TISSUE TRAIN CULTURE PLATES
圓形三維細胞組織培養板采用彈性底部,可用來制備三維基質蛋白細胞培養物,并提供雙軸向拉力,不需要生物膠槽(Trough Loader)
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編號產品
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產品名稱
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TTCF-4001U-Case
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TTCF-4001U-Each
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Circular Foam Culture Plate-Untreated
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TTCF-4001A-Case
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TTCF-4001A-Each
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Circular Foam Culture Plate-Amino
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TTCF-4001C-Case
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TTCF-4001C-Each
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Circular Foam Culture Plate-Collagen Type I
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TTCF-4001C(IV)-Case
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TTCF-4001C(IV)-Each
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Circular Foam Culture Plate-Collagen Type IV
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TTCF-4001E-Case
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TTCF-4001E-Each
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Circular Foam Culture Plate-Elastin
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TTCF-4001P-Case
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TTCF-4001P-Each
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Circular Foam Culture Plate-ProNectin
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TTCF-4001L-Case
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TTCF-4001L-Each
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Circular Foam Culture Plate-Laminin
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TISSUE TRAIN CULTURE PLATES
三維細胞組織培養板采用彈性底部,可用來制備三維基質蛋白細胞培養物,并提供單軸向拉力。
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編號產品
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產品名稱
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Foruse with Standard Trough Loaders (與線形生物膠槽配套使用)
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TT-4001U-Case
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TT-4001U-Each
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Tissue Train Culture Plate-Untreated
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TT-4001A-Case
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TT-4001A-Each
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Tissue Train Culture Plate-Amino
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TT-4001C-Case
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TT-4001C-Each
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Tissue Train Culture Plate-Collagen Type I
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TT-4001C(IV)-Case
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TT-4001C(IV)-Each
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Tissue Train Culture Plate-Collagen Type IV
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TT-4001E-Case
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TT-4001E-Each
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Tissue Train Culture Plate-Elastin
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TT-4001P-Case
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TT-4001P-Each
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Tissue Train Culture Plate-ProNectin
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TT-4001L-Case
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TT-4001L-Each
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Tissue Train Culture Plate-Laminin
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Foruse with Trapezoidal Trough Loaders (與梯形生物膠槽配套使用)
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編號產品
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產品名稱
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TTTP-4001U-Case
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TTTP-4001U-Each
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Trapezoidal TT Culture Plate-Untreated
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TTTP-4001A-Case
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TTTP-4001A-Each
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Trapezoidal TT Culture Plate-Amino
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TTTP-4001C-Case
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TTTP-4001C-Each
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Trapezoidal TT Culture Plate-Collagen Type I
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TTTP-4001C(IV)-Case
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TTTP-4001C(IV)-Each
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Trapezoidal TT Culture Plate-Collagen Type IV
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TTTP-4001E-Case
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TTTP-4001E-Each
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Trapezoidal TT Culture Plate-Elastin
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TTTP-4001P-Case
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TTTP-4001P-Each
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Trapezoidal TT Culture Plate-ProNectin
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TTTP-4001L-Case
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TTTP-4001L-Each
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Trapezoidal TT Culture Plate-Laminin
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22)FX-5000TT系統組成:
預裝FlexSoft®FX-5000軟件計算機系統;
FX5K? Tension FlexLink應力加載控制傳導儀
Tissue Train 三維真空腔基板和四個密封墊片
Tissue Train Trough Loaders (生物膠槽)
Arctangle Loading Posts弧矩形加載平臺
4塊Tissue Train 三維細胞培養板
亞克力板,膠管,快拆接頭,潤滑油
一個干燥過濾器
一對濾水器,
一根25英尺藍色Flex In鏈接管(6.4毫米外徑)
一根25英尺無色Flex Out鏈接管(9.5毫米外徑)
一根25英尺牽張拉伸泵鏈接藍管(9.5毫米外徑)
*大真空度-100Kpa,161升/分的真空負壓泵
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4、細胞流體切應力系統(Flexcell Fluid Shear Stress Device)——提供樣機體驗
4.1、STR-4000六通道流體切應力加載分析設備
Streamer剪切力設備
為細胞提供各種形式的流體切應力:穩流式切應力、脈沖式切應力或者往返式切應力。
在經過特殊基質蛋白包被的25x 75x 1.0mm細胞培養載片上培養細胞。
多達6通道,每個通道放不同載片,可培養不同的細胞
計算機控制的蠕動泵可以調節切應力大小從0-35 dynes/cm2
通過Osci-Flow液體控制儀提供往返式或脈沖式流體切應力。
檢測細胞在液流作用下的排列反應。
設備易拆卸并可高溫**。
可以在經過特殊包被的6個細胞培養載片上同時培養細胞。
提供兩個液流脈沖阻尼器。
Streamer System系統包括:
1)Streamer設備;
2)預裝Streamer控制軟件的計算機;
3)快拆接頭及膠管;
4)蠕動泵;
5)StreamSoft軟件;
6)2個液流脈沖阻尼器;
7)12個細胞培養載片(Culture Slip)
細胞培養載片包括顯微鏡載(物)片和蓋玻片兩種產品,表面經過特殊處理,適合于細胞的貼壁與生長。
兩種規格:75 mm x 25 mm x 1.0 mm ,75 mm x 24 mm x 0.2 mm 。
75 mm x 25 mm x 1.0 mm 細胞培養載片的邊緣涂有1.0 mm寬的特氟隆邊框(Teflon),可以有效控制細胞生長在切應力加載區域。
自身熒光低,光學性能佳。
不同包被的培養表面提高細胞的貼壁與生長。
五種不同包被的培養表面:Amino, Collagen (Type I or IV) Elastin, ProNectin (RGD), Laminin (YIGSR).
所以產品都是無菌獨立包裝,僅供一次性使用。
訂貨信息(請聯系世聯博研公司)
75mm x 25mm x 1.0mm 和 Streamer 或者 FlexFlow 配套使用
產品編號 英文名稱
CS-U Culture Slips — Untreated
CS-A Culture Slips — Amino
CS-C Culture Slips — Collagen Type I
CS-C(IV) Culture Slips — Collagen Type IV
CS-E Culture Slips — Elastin
CS-P Culture Slips — ProNectin
CS-L Culture Slips — Laminin
75mm x 24mm x 0.2mm 和 FlexFlow配套使用
產品編號 英文名稱
FFCS-U Culture Slips — Untreated
FFCS-A Culture Slips — Amino
FFCS-C Culture Slips — Collagen Type I
FFCS-C(IV) Culture Slips — Collagen Type IV
FFCS-E Culture Slips — Elastin
FFCS-P Culture Slips — ProNectin
FFCS-L Culture Slips — Laminin
8)微流納流HiQ Flowmat
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